AYAYDIN Ferhan
Csoportvezető,
Tudományos főmunkatárs
| KOTOGÁNY Edit | Tud. ügyintéző |
| KÓSZÓ Zsuzsanna | Asszisztens |
MIKROSZKÓPOS SEJTANALÍZIS LABORATÓRIUM
Egyetlen kép, tartja a mondás, ezer szóval felér. Az új mikroszkópiás technikák kifejlesztésének köszönhetően, napjaink biológiai és orvosi kutatása egyre inkább függővé vált a mikroszkópos képanalízistől. Ezek a technikák lehetővé teszik szinte bármelyik molekula, annak specifikus jelölése mellett, funkciójának közvetlen analízisét élő sejtekben, élőlényekben. Mindezen új fejlesztések egyedi módon teszik lehetővé az alapvető sejtfolyamatok bonyolult tér-idő dinamikájának direkt megjelenítését és vizsgálatát Laboratóriumunk egyik célja, hogy a legújabb optikai képalkotó technikák bevezetésével valamint azok továbbfejlesztésével lehetővé tegye magunk és mások számára a komplex sejtbeli és sejtek közötti rendeződések és folyamatok megértését és vizsgálatát.
Mikroszkópos Sejtanalízis Laborunkban csúcstechnológia lézer-pásztázó konfokális mikroszkóp, fluoreszcens sztereo mikroszkóp és valósidejű élősejt-analízist lehetővé tevő mikroszkópos állomás található. Ezekkel a modern műszerekkel például háromdimenziós fehérje lokalizációt és mobilitás vizsgálatot és időbeli dinamikai analízist végezhetünk élő sejtekben, szövetekben, szervekben. A biológiai és orvosi alkalmazások mellett, a lézer-pásztázó mikroszkópiának ipari alkalmazásai is vannak, mint például a mikro-elektromechanikai rendszerek vizsgálata, meghibásodás illetve hajszálrepedések tesztelése, ellenőrzése, valamint, számos alkalmazhatósága van az anyagtudományok terén.
Laboratóriumunk egyik speciális kutatási területe a sejtosztódásban résztvevő fehérjék funkcionális analízise, mind humán rákos sejtekben, mind növényi tumor-szerű kallusz szövetekben. A humán ráksejtekben egy SUMO (small ubiquitin-related modifier) nevű fehérje szerepét kutatjuk. Különösen érdekes számunkra a rákos áttételek kialakulásában játszott szerepük vizsgálata.
Laborunk számos kollaborációban is részt vesz kutatócsoportokkal, illetve cégekkel, különböző témákban. Állati eredetű szöveteken kívül, laborunknak tapasztalata van növényi eredetű szövet vizsgálatában is. Ezen témák közül megemlítendő a retinoblasztoma-rokon fehérjék funkcionális analízise, és a P5CS Arabidopsis fehérjék vizsgálata stresszválasz során.
A rendelkezésünkre álló új képalkotó technikákkal és modern mikroszkópos berendezésünkkel, eddig nem látható részleteket és folyamatokat tehetünk láthatóvá és érthetünk meg. Nemcsak a biológia és orvostudomány területén, hanem az ipar és gyógyszerfejlesztésben is számos területen alkalmazhatóak
Válogatott közlemények
Kovacs, I., Ayaydin, F., Oberschall, A., Ipacs, I., Bottka, S., Pongor, S., Dudits, D. and Toth, E.C. (1998). Immunolocalization of a novel annexin-like protein encoded by a stress and abscisic acid responsive gene in alfalfa. Plant J. 15(2):185-197.
Seregelyes, C., Mustardy, L., Ayaydin, F., Sass, L., Kovacs, L., Endre, G., Lukacs, N., Kovacs, I., Vass, I., Kiss, G.B., Horvath, G.V. and Dudits, D. (2000). Nuclear localization of a hypoxia-inducible novel non-symbiotic hemoglobin in cultured alfalfa cells. FEBS Lett. 482(1):125-130.
Ayaydin, F., Vissi, E., Meszaros, T., Miskolczi, P., Kovacs, I., Feher, A., Dombradi, V., Erdodi, F., Gergely, P. and Dudits, D. (2000). Inhibition of serine/threonine-specific protein phosphatases causes premature activation of cdc2MsF kinase at G2/M transition and early mitotic microtubule organization. Plant J. 23(1):85-96.
Ayaydin, F. and Dasso, M. (2004). Distinct in vivo dynamics of vertebrate SUMO paralogues. Mol. Biol. Cell 15(12):5208-5218.
Mukhopadhyay, D., Ayaydin, F., Kolli, N., Tan, S.H., Anan, T., Kametaka, A., Azuma, Y., Wilkinson, K.D. and Dasso, M. (2006). SUSP1 antagonizes formation of highly SUMO2/3-conjugated species. J. Cell Biol. 174(7):939-949.
Székely, G., Abrahám, E., Cséplő, A., Rigó, G., Zsigmond, L., Csiszár, J., Ayaydin, F., Strizhov, N., Jásik, J., Schmelzer, E., Koncz, C. and Szabados, L. (2008). Duplicated P5CS genes of Arabidopsis play distinct roles in stress regulation and developmental control of proline biosynthesis. Plant J. 53(1):11-28.
Snyrychová, I., Ayaydin, F. and Hideg, E. (2009). Detecting hydrogen peroxide in leaves in vivo, a comparison of methods. Physiologia Plantarum 135(1): 1-18.
Kotogány, E., Dudits, D., Horváth, V.G. and Ayaydin F. (2010). A rapid and robust assay for detection of S-phase cell cycle progression in plant cells and tissues by using ethynyl deoxyuridine. Plant Methods (6:5)
